發(fā)酵乳中乳酸菌的選擇性計(jì)數(shù)及分離鑒定
發(fā)酵乳是以生牛(羊)乳或乳粉為原料,經(jīng)殺菌、發(fā)酵后制成的pH值降低的產(chǎn)品。與傳統(tǒng)發(fā)酵不同,發(fā)酵乳通過(guò)添加嗜熱鏈球菌、德氏乳桿菌保加利亞亞種等乳酸菌作為發(fā)酵劑加快發(fā)酵乳的發(fā)酵過(guò)程[1]。乳酸菌對(duì)人體的健康有很多益處,有助于增加腸道微生物的定植,治療和預(yù)防腹瀉、緩解便秘、增強(qiáng)人體的的免疫力等[2-3],但是乳酸菌需要達(dá)到一定數(shù)量才能起到保健作用,因此發(fā)酵乳中的活菌數(shù)尤其重要。為保證足夠數(shù)量活的益生菌到達(dá)腸道中,GB 19302、ISO 27205等國(guó)內(nèi)外相關(guān)機(jī)構(gòu)規(guī)定,發(fā)酵乳中益生菌的數(shù)量不得少于106CFU/mL[4]。近年來(lái)發(fā)酵乳產(chǎn)業(yè)快速發(fā)展,為提升發(fā)酵乳的品質(zhì),乳桿菌、雙歧桿菌等益生菌加入發(fā)酵乳中以增加產(chǎn)品的芳香味道和保健功能等[1],因此需要簡(jiǎn)單、可靠的方法來(lái)確保商業(yè)發(fā)酵乳中發(fā)酵劑微生物和功能性微生物的含量,以保證產(chǎn)品的質(zhì)量。
目前對(duì)于發(fā)酵乳中乳酸菌活菌數(shù)的檢測(cè)主要包括分子生物學(xué)定量分析方法、丙二醇甲醚醋酸酯/疊氮溴化乙錠結(jié)合實(shí)時(shí)定量等非培養(yǎng)方法,以及傳統(tǒng)可培養(yǎng)方法。非培養(yǎng)方法是以乳酸菌的基因組核酸序列或細(xì)胞中的活菌數(shù)為基礎(chǔ)的鑒別方法,往往對(duì)儀器設(shè)備具有較高的要求[5]。傳統(tǒng)培養(yǎng)方法是基于乳酸菌的理化特性,實(shí)現(xiàn)對(duì)乳酸菌的選擇性分離,操作簡(jiǎn)便、設(shè)備依賴度低,適于廣泛推廣應(yīng)用[3-6]。但是目前傳統(tǒng)培養(yǎng)方法,往往存在培養(yǎng)基選擇性差、計(jì)數(shù)結(jié)果不準(zhǔn)確等問(wèn)題。因此根據(jù)不同乳酸菌的特性優(yōu)化選擇性培養(yǎng)基,結(jié)合菌種鑒定技術(shù),實(shí)現(xiàn)發(fā)酵乳中乳酸菌的種水平活菌計(jì)數(shù)具有重要意義。
本文主要聚焦市售發(fā)酵乳中常用的乳酸菌組合,通過(guò)驗(yàn)證和比較國(guó)內(nèi)外標(biāo)準(zhǔn)、文獻(xiàn)中選擇性培養(yǎng)基的選擇性,并采用快速鑒定、形態(tài)學(xué)特征、生理生化和分子生物學(xué)特征等方法確定復(fù)合菌發(fā)酵乳中的不同種類乳酸菌的活菌數(shù),為復(fù)合菌發(fā)酵乳產(chǎn)品的質(zhì)量控制提供技術(shù)參考。同時(shí)為政府監(jiān)管、行業(yè)標(biāo)準(zhǔn)法規(guī)制定提供技術(shù)支撐,對(duì)乳酸菌在乳品行業(yè)更加安全和廣泛的應(yīng)用具有重要意義。
1 材料與方法
1.1 發(fā)酵乳產(chǎn)品
3種代表性的不同品牌發(fā)酵乳產(chǎn)品A、B、C購(gòu)于北京大型超市,產(chǎn)品中標(biāo)識(shí)菌株類別及活菌數(shù)如下:
樣品1:品牌A(標(biāo)識(shí):保加利亞乳桿菌,嗜熱鏈球菌,干酪乳桿菌,乳酸菌活菌數(shù)≥1×106CFU/g);
樣品2:品牌B (標(biāo)識(shí):動(dòng)物雙歧桿菌BB-12,嗜熱鏈球菌,德氏乳桿菌保加利亞亞種,保加利亞乳桿菌和嗜熱鏈球菌總數(shù)1×106CFU/g);
樣品3:品牌C(標(biāo)識(shí):乳雙歧桿菌BL99,嗜熱鏈球菌,保加利亞乳桿菌,乳雙歧桿菌的≥1×106CFU/g)。
1.2 試劑與儀器
M17培養(yǎng)基,青島海博生物技術(shù)股份有限公司;Chalmers(MC)培養(yǎng)基、De Man Rogosa Sharpe(MRS)培養(yǎng)基(BD)、莫匹羅星鋰鹽和半胱氨酸鹽酸鹽,北京陸橋技術(shù)股份有限公司;萬(wàn)古霉素鹽酸鹽,國(guó)藥集團(tuán)。
拍擊式均質(zhì)器,法國(guó) interscience 公司;pH計(jì),梅特勒托利多儀器有限公司;厭氧產(chǎn)氣袋,日本三菱 MGC。
1.3 實(shí)驗(yàn)方法
1.3.1 選擇性培養(yǎng)基活菌計(jì)數(shù)
無(wú)菌操作稱取25 g樣品,置于225 mL生理鹽水中,充分振蕩混勻,制成1∶10(g∶mL)樣品勻液。用微量移液器吸取1∶10樣品勻液1 mL,沿管壁緩慢注于裝有9 mL生理鹽水的無(wú)菌試管,振搖試管使其混合均勻,制成1∶100的樣品勻液。按上述操作順序,依次重復(fù)。選擇2~3個(gè)連續(xù)的適宜稀釋度,每個(gè)稀釋度吸取1 mL樣品勻液于滅菌平皿內(nèi),將冷卻至48 ℃的培養(yǎng)基傾注入平皿內(nèi)。
參照GB 4789.35—2016對(duì)3種樣品中的乳酸菌進(jìn)行計(jì)數(shù),每種樣品分別采用MC培養(yǎng)基、改良MRS培養(yǎng)基和MRS培養(yǎng)基進(jìn)行計(jì)數(shù)。同時(shí),根據(jù)樣品標(biāo)識(shí)中的菌種類別選用適宜的培養(yǎng)基進(jìn)行菌種的選擇性分離培養(yǎng)和計(jì)數(shù),選擇性培養(yǎng)基和培養(yǎng)條件如表1所示。
表1 選擇性培養(yǎng)基及培養(yǎng)條件
Table 1 Selective medium and culture conditions

注:酸化MRS是指將MRS培養(yǎng)基通過(guò)乙酸調(diào)節(jié)至pH 5.4;MRS(含50 μg/mL的萬(wàn)古霉素)是指在200 mL的MRS培養(yǎng)基中加入1 mL質(zhì)量分?jǐn)?shù)為1%的萬(wàn)古霉素,使萬(wàn)古霉素的終質(zhì)量濃度為50 μg/mL;雙歧桿菌培養(yǎng)基是指含25 μg/mL莫匹羅星鋰鹽和500 μg/mL半胱氨酸鹽酸鹽的MRS培養(yǎng)基
1.3.2 菌株分離鑒定
從選擇性培養(yǎng)基上隨機(jī)選取5個(gè)單菌落,通過(guò)平板劃線法進(jìn)行分離純化,獲得純菌株。
1.3.2.1 基質(zhì)輔助激光解吸電離飛行時(shí)間質(zhì)譜(matrix-assisted laser desorption/ionization time of flight mass spectrometry,MALDI-TOF-MS)快速鑒定
選取新鮮培養(yǎng)的分離株到裝有300 μL超純水的離心管中,形成菌懸液;加入無(wú)水乙醇,渦旋離心取沉淀;加入50 μL 70%(體積分?jǐn)?shù))的甲酸水溶液,渦旋混合均勻;加入50 μL乙腈,通過(guò)移液器反復(fù)吹打使其混合均勻;離心取上清液加入到靶板孔中,室溫下晾干;滴加 α-氰基-4-羥基肉桂酸(α-cyano-4-hydroxycinnamic acid,HCCA)基質(zhì)溶液室溫下晾干,形成結(jié)晶;將點(diǎn)好樣品的靶板放入儀器內(nèi),微生物鑒定標(biāo)配方法MBT_FC,上機(jī)測(cè)試,并采集質(zhì)譜數(shù)據(jù)。
1.3.2.2 多相鑒定
利用細(xì)菌基因組DNA提取試劑盒(OMEGA公司)提取分離株的基因組DNA。以基因組DNA為模板,利用通用引物27F和1492R對(duì)菌株的16S rRNA基因進(jìn)行PCR擴(kuò)增。反應(yīng)體系按照PCR Mixture使用說(shuō)明進(jìn)行配制(Tiangen公司)。反應(yīng)程序?yàn)椋?4 ℃預(yù)變性2 min,94 ℃變性30 s,55 ℃復(fù)性30 s,72 ℃延伸1 min 30 s,30個(gè)循環(huán)后72 ℃延伸10 min。利用特異性引物對(duì)groEL基因和groEL基因序列進(jìn)行擴(kuò)增[8],PCR反應(yīng)體系同上。擴(kuò)增產(chǎn)物測(cè)序后,將序列結(jié)果遞交到EzBioCloud和NCBI數(shù)據(jù)庫(kù)進(jìn)行比對(duì)分析[9]。采用MEGA 4軟件中的Clustal功能對(duì)分離株與近緣種菌株的16S rRNA基因、pheS基因或groEL基因進(jìn)行多序列比對(duì),并使用鄰接法進(jìn)行系統(tǒng)發(fā)育及分子進(jìn)化分析[10]。
將分離得到9個(gè)分離株接種到適宜培養(yǎng)基上,培養(yǎng)一定時(shí)間后,收集新鮮菌體,加入2.5% 戊二醛4 ℃固定過(guò)夜。離心收集菌體,100 mmol/L磷酸鹽緩沖液(pH 7.2)漂洗3次。30%、50%、70%、85%、95%乙醇梯度脫水后100%乙醇脫水3次。干燥后用噴金—離子濺射儀BAL-TEC SCD005進(jìn)行噴金,使用掃描電鏡Hitachi SU8010進(jìn)行菌體形態(tài)觀察[11]。使用VITEK 2 Compact鑒定系統(tǒng)對(duì)分離株的底物利用特征進(jìn)行測(cè)定。
2 結(jié)果與分析
2.1 選擇性培養(yǎng)基和GB 4789.35的活菌計(jì)數(shù)
根據(jù)發(fā)酵乳上的標(biāo)識(shí),依據(jù)表1中選擇性培養(yǎng)基和GB 4789.35對(duì)3種品牌的發(fā)酵乳進(jìn)行選擇性計(jì)數(shù),結(jié)果如表2所示。GB 4789.35對(duì)3個(gè)樣品的乳酸菌總數(shù)的計(jì)數(shù)結(jié)果均高于選擇性培養(yǎng)基。其中選擇性培養(yǎng)基M17對(duì)嗜熱鏈球菌的計(jì)數(shù)結(jié)果均高于GB 4789.35中的MC培養(yǎng)基。
在樣品1中,選擇性培養(yǎng)基MRS(含50 μg/mL的萬(wàn)古霉素)和酸化MRS的計(jì)數(shù)結(jié)果之和為樣品中的乳桿菌總數(shù),GB 4789.35中MRS培養(yǎng)基的計(jì)數(shù)結(jié)果為乳桿菌總數(shù)。MRS培養(yǎng)基的計(jì)數(shù)結(jié)果遠(yuǎn)高于選擇性培養(yǎng)基。在樣品2和樣品3中,GB 4789.35的MRS培養(yǎng)基主要用于乳桿菌和雙歧桿菌總數(shù)的計(jì)數(shù)。本文采用的選擇性培養(yǎng)基酸化MRS和雙歧桿菌培養(yǎng)基同樣用于上述兩種菌種的計(jì)數(shù),MRS培養(yǎng)基的計(jì)數(shù)結(jié)果均高于選擇性培養(yǎng)基。
表2 選擇性培養(yǎng)基和GB 4789.35—2016的活菌計(jì)數(shù)及快速鑒定結(jié)果
Table 2 The viable counting and rapid identification result of selective medium and GB 4789.35—2016

注:*表示兩種方法的計(jì)數(shù)結(jié)果有顯著性差異,/表示未檢測(cè)該項(xiàng)目
2.2 菌株分離鑒定
2.2.1 MALDI-TOF快速鑒定
從每種計(jì)數(shù)平板上隨機(jī)挑選5個(gè)菌落,進(jìn)行分離純化后,通過(guò)MALDI-TOF快速鑒定,確定培養(yǎng)基對(duì)目標(biāo)菌種的選擇性,結(jié)果如表2所示。
在樣品1中,M17和MRS(含50 μg/mL的萬(wàn)古霉素)對(duì)樣品中嗜熱鏈球菌和干酪乳桿菌具有很好的選擇性,隨機(jī)挑選的5個(gè)菌落經(jīng)MALDI-TOF鑒定,結(jié)果均為嗜熱鏈球菌和干酪乳桿菌。表明在發(fā)酵乳中含有干酪乳桿菌的情況下,酸化MRS培養(yǎng)基上對(duì)德氏乳桿菌的選擇性較差。
樣品2和樣品3中M17和雙歧桿菌培養(yǎng)基對(duì)嗜熱鏈球菌和動(dòng)物雙歧桿菌的選擇性良好。在兩種培養(yǎng)基上隨機(jī)挑選的5個(gè)菌落經(jīng)MALDI-TOF鑒定,結(jié)果均為目標(biāo)菌種。但是酸化MRS培養(yǎng)基對(duì)德氏乳桿菌的選擇性在兩種樣品中具有一定的差異。樣品2的酸化MRS培養(yǎng)基上隨機(jī)挑選的5個(gè)菌落,經(jīng)鑒定均為動(dòng)物雙歧桿菌,樣品3隨機(jī)挑選的菌落鑒定結(jié)果均為德氏乳桿菌。這種差異性可能與菌種的數(shù)量有關(guān)。
GB 4789.35中的培養(yǎng)基經(jīng)過(guò)MALDI-TOF快速鑒定,結(jié)果顯示MC培養(yǎng)基和改良MRS培養(yǎng)基對(duì)嗜熱鏈球菌和雙歧桿菌具有良好的選擇性。但在3個(gè)樣品中,MRS培養(yǎng)基均有嗜熱鏈球菌的生長(zhǎng)。因此,GB 4789.35方法對(duì)乳桿菌和雙歧桿菌計(jì)數(shù)的結(jié)果均高于選擇性培養(yǎng)基,使得GB 4789.35檢測(cè)的乳酸菌總數(shù)較實(shí)際結(jié)果偏高。
2.2.2 復(fù)合菌發(fā)酵乳中分離株的多相鑒定
選取9個(gè)分離株進(jìn)行多相鑒定,發(fā)酵乳中分離株的鑒定結(jié)果均與發(fā)酵乳的標(biāo)識(shí)一致(表3)。動(dòng)物雙歧桿菌乳亞種(Bifidobacterium animalis subsp.lactis)曾用名為乳雙歧桿菌(Bifidobacterium lactis)[12];德氏乳桿菌保加利亞亞種(Lactobacillus delbrueckii subsp.bulgaricus)的曾用名為保加利亞乳桿菌(Lactobacillus bulgaricus)[13]。干酪乳桿菌(Lactobacillu casei)在2020年其分類學(xué)地位變更為干酪乳酪桿菌Lacticaseibacillus casei [14]。德氏乳桿菌保加利亞亞種(L.delbrueckii subsp.bulgaricus)通過(guò)多相鑒定只能鑒定到種水平,需進(jìn)一步通過(guò)全基因組測(cè)序及平均核苷酸一致性等方法鑒定到亞種水平。
表3 發(fā)酵乳分離株鑒定結(jié)果
Table 3 The identification results of isolates from the fermented milk

2.2.2.1 形態(tài)學(xué)特征觀察
對(duì)9個(gè)分離株進(jìn)行掃描電鏡觀察,其掃描電鏡的形態(tài)特征如圖1所示。M17培養(yǎng)基上獲得的分離株的菌體形態(tài)特征為橢球形,單個(gè)、成對(duì)或呈鏈狀排列,符合嗜熱鏈球菌的典型形態(tài)特征;MRS(含50 μg/mL的萬(wàn)古霉素)培養(yǎng)基上的分離株的菌體形態(tài)特征為短桿狀,單個(gè)或成對(duì)排列;雙歧桿菌培養(yǎng)基分離株的菌體形態(tài)特征為不規(guī)則桿狀,兩端稍膨大;酸化MRS培養(yǎng)基分離株的菌體形態(tài)特征包括兩種,在樣品2和樣品3中呈長(zhǎng)桿狀,在樣品1中呈彎曲桿狀,單個(gè)或成對(duì)排列。

a-M-1;b-M-2;c-M-3;d-V-1;e-B-1;f-B-2;g-A-1;h-A-2;i-A-3
圖1 分離株的掃描電鏡圖
Fig.1 The scanning electron microscope of the isolated strains
2.2.2.2 生理生化特性
通過(guò)VITEK2 compact對(duì)9個(gè)分離株進(jìn)行生理生化檢測(cè),檢測(cè)結(jié)果如表4所示。
表4 分離株的生理生化特征
Table 4 Physiological and biochemical characteristic of isolated strains

注:“+”陰性;“+w”弱陽(yáng)性;“-”陰性
2.2.2.3 16S rRNA基因及功能基因序列鑒定
對(duì)9株分離株進(jìn)行分子水平鑒定,擴(kuò)增16S rDNA和相關(guān)持家基因的序列,并進(jìn)行序列比對(duì)并構(gòu)建系統(tǒng)發(fā)育樹(shù),如圖2所示。分離株B-1和B-2,通過(guò)16S rDNA 和groEL基因序列的比對(duì),和B.animalis subsp.lactis的相似性高達(dá)100%;分離株A-1、A-2、A-3,通過(guò)16S rDNA序列比對(duì),和L.delbrueckii subsp.bulgaricus、Lactobacillus delbrueckii subsp.sunkii的序列相似性均高于99%;分離株M-1、M-2、M-3,通過(guò)16S rDNA 和pheS基因進(jìn)行序列比對(duì),和S.thermophilus的同源性為99.4%;分離株V-1,通過(guò)16S rDNA和pheS基因序列比對(duì),和L.casei的序列相似性為100%。

a、b-雙歧桿菌培養(yǎng)基分離株的16S rRNA基因和groEL基因;c-酸化MRS培養(yǎng)基分離株的16S rRNA基因;d、e-M17培養(yǎng)基分離株的16S rRNA 基因和PheS基因;f、g-MRS培養(yǎng)基(含50 μg/mL的萬(wàn)古霉素)分離株16S rRNA基因和PheS基因
圖2 分離株與相關(guān)種的系統(tǒng)發(fā)育樹(shù)
Fig.2 The phylogenetic trees of isolated strain and other related species 注:采用MEGA5.0軟件,鄰位連接法顯示菌株與相關(guān)模式種系統(tǒng)發(fā)育樹(shù),進(jìn)行1 000次的相似度重復(fù)計(jì)算,圖中發(fā)育樹(shù)節(jié)點(diǎn)只顯示Bootstrap值 >50%數(shù)值,“T”表示模式菌株
2.3 選擇性培養(yǎng)基對(duì)目標(biāo)菌種的選擇性
本研究中,嗜熱鏈球菌的選擇性計(jì)數(shù)培養(yǎng)基M17和MC對(duì)嗜熱鏈球菌都具有良好的選擇性。但計(jì)數(shù)結(jié)果顯示,3個(gè)樣品中M17培養(yǎng)基的計(jì)數(shù)結(jié)果均高于MC培養(yǎng)基。M17培養(yǎng)基的營(yíng)養(yǎng)豐富,有利于發(fā)酵乳中嗜熱鏈球菌的復(fù)蘇,其中高濃度的甘油磷酸鈉不僅具有良好的緩沖作用,還能抑制發(fā)酵乳中其他乳酸菌如保加利亞乳桿菌的生長(zhǎng)[15-16],MC培養(yǎng)基以碳酸鈣作為緩沖劑,緩沖能力較弱,粉末容易沉淀或結(jié)塊,會(huì)影響菌落生長(zhǎng)[17]。國(guó)際標(biāo)準(zhǔn)和相關(guān)文獻(xiàn)多數(shù)推薦采用M17培養(yǎng)基對(duì)嗜熱鏈球菌計(jì)數(shù)[18]。
含有萬(wàn)古霉素的MRS培養(yǎng)基對(duì)干酪乳桿菌具有良好的選擇性。干酪乳桿菌的選擇性計(jì)數(shù)主要根據(jù)其理化特性設(shè)計(jì)選擇性培養(yǎng)基,如劉愛(ài)萍等[6]研究表明以D-核糖為唯一碳源的培養(yǎng)基對(duì)干酪乳桿菌具有良好的選擇性。本文依據(jù)干酪乳桿菌的萬(wàn)古霉素固有耐藥實(shí)現(xiàn)對(duì)干酪乳桿菌選擇性的計(jì)數(shù)。該選擇性培養(yǎng)基的應(yīng)用前提為發(fā)酵乳中含有嗜熱鏈球菌、德氏乳桿菌和干酪乳桿菌。當(dāng)發(fā)酵乳中含有其他萬(wàn)古霉素固有耐藥的乳桿菌,如發(fā)酵乳桿菌、植物乳桿菌、鼠李糖乳桿菌[19],該方法則不適用。
酸化MRS培養(yǎng)基對(duì)不同發(fā)酵乳中德氏乳桿菌的計(jì)數(shù)結(jié)果準(zhǔn)確性存在差異,該培養(yǎng)基ISO 7889中規(guī)定對(duì)德氏乳桿菌保加利亞亞種的分離計(jì)數(shù),該方法適用于發(fā)酵乳中只含有嗜熱鏈球菌和德氏乳桿菌保加利亞亞種,不具有普遍性。嗜酸乳桿菌、干酪乳桿菌和部分雙歧桿菌等乳酸菌在酸化MRS培養(yǎng)基上也可以較好的生長(zhǎng)嗜酸乳桿菌、干酪乳桿菌和部分雙歧桿菌等在酸化MRS培養(yǎng)基上也可以較好的生長(zhǎng)[20]。為更好的選擇性分離德氏乳桿菌保加利亞亞種,在后續(xù)實(shí)驗(yàn)中可通過(guò)提高乙酸鈉的含量、采用改良RCM培養(yǎng)基等方法提高計(jì)數(shù)的準(zhǔn)確性[21-22]。
GB 4789.35—2016中規(guī)定,MRS培養(yǎng)基用于測(cè)定雙歧桿菌屬和乳桿菌屬的總數(shù),嗜熱鏈球菌的總數(shù)采用MC培養(yǎng)基。3個(gè)樣品的MRS培養(yǎng)基上均檢測(cè)到嗜熱鏈球菌,MRS培養(yǎng)基中的蛋白胨、牛肉粉、酵母粉和葡萄糖,可以為嗜熱鏈球菌的生長(zhǎng)提供碳源、氮源等相關(guān)營(yíng)養(yǎng)物質(zhì),不能選擇性的計(jì)數(shù)乳桿菌和雙歧桿菌。俞漪等[5]提出可通過(guò)形態(tài)特征進(jìn)行乳桿菌和厭氧菌的區(qū)分,提出在厭氧培養(yǎng)下,乳桿菌呈乳白色,較大,嗜熱鏈球菌呈半透明狀,較小,在乳酸菌計(jì)數(shù)的過(guò)程中可通過(guò)菌落形態(tài)特征實(shí)現(xiàn)乳桿菌計(jì)數(shù)。
3 結(jié)論
本研究以3種復(fù)合發(fā)酵乳為研究對(duì)象,采用不同的選擇性培養(yǎng)基,結(jié)合MALDI-TOF MS快速鑒定和細(xì)菌多相鑒定技術(shù),實(shí)現(xiàn)了發(fā)酵乳中不同乳酸菌的選擇性計(jì)數(shù)及種水平的精準(zhǔn)鑒定。研究表明M17培養(yǎng)基和雙歧桿菌培養(yǎng)基對(duì)嗜熱鏈球菌和雙歧桿菌具有良好的選擇性,可以對(duì)實(shí)現(xiàn)復(fù)合發(fā)酵乳產(chǎn)品中乳酸菌的精準(zhǔn)計(jì)數(shù)。德氏乳桿菌的選擇性計(jì)數(shù)較難,需進(jìn)一步優(yōu)化培養(yǎng)基或采用分子生物學(xué)方法等進(jìn)行準(zhǔn)確計(jì)數(shù)。本研究中選擇性培養(yǎng)基應(yīng)用前提為發(fā)酵乳產(chǎn)品的菌種種類標(biāo)識(shí)范圍。若乳酸菌種類組合變化,需對(duì)培養(yǎng)基的選擇性進(jìn)行重新評(píng)估。本文所研究的選擇性計(jì)數(shù)培養(yǎng)基以及培養(yǎng)基選擇性的評(píng)估方法,為完善復(fù)合發(fā)酵乳產(chǎn)品的質(zhì)量控制和國(guó)家標(biāo)準(zhǔn)的修訂提供技術(shù)支撐,助力提升發(fā)酵乳產(chǎn)品微生物質(zhì)量控制及市場(chǎng)監(jiān)管水平。
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