植物乳桿菌對(duì)頭孢氨芐耐藥性進(jìn)化及益生性狀穩(wěn)定性評(píng)價(jià)

頭孢氨芐是一種β-內(nèi)酰胺類抗生素，具有廣譜抗菌性和低毒性，廣泛應(yīng)用于治療由細(xì)菌引起的呼吸道、皮膚、泌尿道以及胃腸道等感染性疾病[1]。然而由于抗生素的廣泛使用或過度使用，使其在治療過程中對(duì)細(xì)菌產(chǎn)生一定的耐藥性，造成一些公共安全問題。目前有關(guān)抗生素耐藥性研究大多集中在致病菌，一旦致病菌獲得耐藥性就會(huì)造成臨床治療的失敗[2]。隨著人們對(duì)細(xì)菌耐藥性研究的逐漸深入，益生菌耐藥性的研究已受到人們的關(guān)注[3]，當(dāng)益生菌獲得耐藥性后，也許會(huì)對(duì)其益生效果產(chǎn)生積極作用，尤其是當(dāng)益生菌與抗生素聯(lián)合應(yīng)用時(shí)，更有利于益生菌發(fā)揮益生作用。據(jù)報(bào)道，通過抗生素和益生菌的聯(lián)合應(yīng)用能協(xié)同治療腸道腹瀉、結(jié)腸炎、炎癥性腸病等相關(guān)疾病[4]。已有研究將植物乳桿菌、鼠李糖乳桿菌、嗜酸乳桿菌和雙歧桿菌與甲硝唑或萬古霉素聯(lián)合應(yīng)用在治療腸道疾病中，也取得一定的效果[5]，這進(jìn)一步促進(jìn)了益生菌的應(yīng)用。

植物乳桿菌是人體胃腸道中的一種固有益生菌，具有改善腸道菌群，抑制致病菌生長(zhǎng)繁殖，促進(jìn)腸道營(yíng)養(yǎng)物質(zhì)吸收利用的作用[6]，廣泛應(yīng)用于各種發(fā)酵食品及保健食品中[7]。要發(fā)揮共生菌的益生效果，益生菌必須經(jīng)過胃液的酸性環(huán)境和腸道的高膽鹽環(huán)境，并能在腸道中定植[3]，大多數(shù)益生菌對(duì)抗生素是敏感的[7]，當(dāng)有抗生素存在時(shí)，抗生素在殺死致病菌的同時(shí)也會(huì)導(dǎo)致益生菌的死亡，從而影響益生菌的效果。通過馴化可有效提高益生菌的耐藥性[8]，然而益生菌在獲得耐藥性的同時(shí)，其益生特性也許會(huì)發(fā)生相應(yīng)改變，從而影響其益生效果。因此，本研究通過實(shí)驗(yàn)室進(jìn)化方法將植物乳桿菌在頭孢氨芐中進(jìn)行耐藥性馴化，并對(duì)進(jìn)化菌株的益生特性進(jìn)行評(píng)價(jià)，同時(shí)應(yīng)用全基因組測(cè)序技術(shù)檢測(cè)進(jìn)化過程中菌株的基因突變，為植物乳桿菌與抗生素的聯(lián)合應(yīng)用提供基礎(chǔ)。

1 材料與方法

1.1 實(shí)驗(yàn)材料

植物乳桿菌(ATCC 14917)，中國(guó)普通微生物菌種保藏管理中心；金黃色葡萄球菌(ATCC 6538)、大腸桿菌(ATCC 8739)、沙門氏菌(CMCC 50071)、單核細(xì)胞增生李斯特菌(ATCC 15313)，中國(guó)工業(yè)微生物菌種保藏管理中心；頭孢氨芐，美國(guó)Sigma-Aldrich公司；de Man Rogosa Sharpe(MRS)培養(yǎng)基、Luria-Bertani(LB)培養(yǎng)基，北京奧博星生物技術(shù)有限責(zé)任公司；ISO(ISO-SENSITEST BROTH)培養(yǎng)基，英國(guó)oxoid公司；LSM培養(yǎng)基由90% ISO培養(yǎng)基和10% MRS培養(yǎng)基組成；牛膽鹽、氯仿、二甲苯和乙酸乙酯均為分析純，天津市天力化學(xué)試劑有限公司。

MRS培養(yǎng)基(g/L)：蛋白胨10、葡萄糖20、乙酸鈉5、硫酸鎂0.2、硫酸錳0.05、牛肉粉5、酵母粉4、磷酸氫二鉀2、檸檬酸三銨2、吐溫80 1 mL，pH 6.2±0.2。

LB培養(yǎng)基(g/L)：胰蛋白胨10、酵母提取物5、氯化鈉10，pH 7.0。

ISO培養(yǎng)基(g/L)：水解酪蛋白11、蛋白胨3、葡萄糖2、氯化鈉3、可溶性淀粉1、磷酸氫二鈉2、乙酸鈉1、甘油磷酸鎂0.2、葡萄糖酸鈣0.1、硫酸鈷0.001、硫酸銅0.001、硫酸鋅0.001、硫酸亞鐵0.001、氯化錳0.002、甲萘醌0.001、氰鈷胺0.001、L-半胱氨酸鹽酸鹽0.02、L-色氨酸0.02、吡哆醇0.01，pH 7.4±0.2。

1.2 菌株的培養(yǎng)條件

菌株的培養(yǎng)條件按照ISO 10932/IDF223[9]的標(biāo)準(zhǔn)方法進(jìn)行。菌株以1%接種量加入MRS培養(yǎng)基中經(jīng)37 ℃，24 h培養(yǎng)進(jìn)行活化，活化后的菌株以1%接種量在LSM培養(yǎng)基中經(jīng)37 ℃，24 h傳代培養(yǎng)，進(jìn)行菌株的耐藥性測(cè)定和實(shí)驗(yàn)室進(jìn)化。

在進(jìn)行菌株益生特性的測(cè)定時(shí)，將活化后的菌株在5 000×g下離心10 min，然后用0.9%(質(zhì)量分?jǐn)?shù))的滅菌生理鹽水將沉淀洗滌3次，再重懸于0.9%的滅菌生理鹽水中，調(diào)整菌液濃度為109 CFU/mL后進(jìn)行測(cè)定。

1.3 菌株耐藥性的測(cè)定

菌株耐藥性測(cè)定按照ISO 10932/IDF223[9]中的標(biāo)準(zhǔn)方法進(jìn)行，菌株的耐藥性用最低抑制濃度(minimum inhibitory concentration，MIC)表示。首先用LSM培養(yǎng)基配制頭孢氨芐質(zhì)量濃度為8 192 μg/mL的儲(chǔ)備液，用0.22 μm的濾膜過濾，頭孢氨芐質(zhì)量濃度的檢測(cè)范圍為1～256 μg/mL，儲(chǔ)備液用LSM培養(yǎng)基進(jìn)行2倍梯度稀釋。將活化后的菌株用LSM培養(yǎng)基稀釋500倍，按照1%接種量接入含不同濃度頭孢氨芐的稀釋液中，在37 ℃下培養(yǎng)48 h后觀察無肉眼可見細(xì)菌生長(zhǎng)對(duì)應(yīng)的最低抗生素濃度作為菌株的MIC值。

1.4 實(shí)驗(yàn)室進(jìn)化

為了獲得高耐藥性的菌株，在實(shí)驗(yàn)室進(jìn)化中選用半抑制濃度(IC50)作為菌株傳代時(shí)抗生素的初始濃度，IC50是指能夠抑制50%菌株生長(zhǎng)的抗生素濃度[10]。本實(shí)驗(yàn)中，菌株在MRS培養(yǎng)基中經(jīng)37 ℃活化24 h后，按1%接種量接入含8 μg/mL頭孢氨芐的LSM培養(yǎng)基中，在37 ℃培養(yǎng)24 h，連續(xù)培養(yǎng)5 d，然后每5 d將LSM培養(yǎng)基中抗生素濃度增加1.5倍，繼續(xù)培養(yǎng)進(jìn)化，直到MIC值保持穩(wěn)定，其中每5 d測(cè)定1次MIC值。為了探究菌株耐藥性的穩(wěn)定性，將獲得的耐藥性穩(wěn)定的菌株在不含頭孢氨芐的LSM培養(yǎng)基中繼續(xù)傳代培養(yǎng)，并再次測(cè)定其MIC值直到穩(wěn)定。

1.5 菌株益生特性的測(cè)定

1.5.1 菌株耐酸和耐膽鹽能力的測(cè)定

菌株耐酸能力的測(cè)定按照SUI等[11]的方法進(jìn)行。用6 mol/L的鹽酸將MRS培養(yǎng)基pH調(diào)整為2.0、3.0、4.0，將活化后的菌株以1%的接種量接種于不同pH的MRS培養(yǎng)基中，在37 ℃培養(yǎng)3 h，用MRS瓊脂培養(yǎng)基在37 ℃培養(yǎng)24 h后進(jìn)行菌落計(jì)數(shù)。

菌株耐膽鹽能力的測(cè)定按照SUI等[11]的方法進(jìn)行。在MRS培養(yǎng)基中加入牛膽鹽，使膽鹽質(zhì)量濃度達(dá)到0、1、3、5 g/L，將活化后的菌株以1%的接種量接種于不同牛膽鹽濃度的MRS培養(yǎng)基中，37 ℃培養(yǎng)3 h，用MRS瓊脂培養(yǎng)基在37 ℃培養(yǎng)24 h后進(jìn)行菌落計(jì)數(shù)。

1.5.2 菌株黏附能力的測(cè)定

菌株的黏附能力用細(xì)胞疏水性和自凝集能力評(píng)價(jià)[12]。

細(xì)胞疏水性的測(cè)定采用PATEL等[12]的方法。將活化后的菌株按1%接種量接入PBS緩沖液(0.1 mol/L，pH 7.2)中，測(cè)定菌懸液在600 nm處的吸光度作為A0，然后將菌懸液與等體積的氯仿、二甲苯和乙酸乙酯混合，渦旋振蕩5 min，然后靜置30 min，直至混合物分層，在600 nm處測(cè)量水相吸光度作為A30。細(xì)胞疏水率計(jì)算如公式(1)所示：

疏水率

(1)

菌株自凝集能力的測(cè)定采用COLLADO等[13]的方法。將活化后的菌株懸浮在PBS緩沖液(0.1 mol/L，pH 7.2)中，用PBS緩沖液將吸光度(OD600nm)調(diào)節(jié)至0.25±0.05，然后在37 ℃靜置，在靜置2、16、20、24 h時(shí)，測(cè)量其在600 nm處的吸光度。自凝集率計(jì)算如公式(2)所示：

自凝集率

(2)

式中：At代表2、16、20、24 h的OD600nm值；A0代表0 h的OD600nm值。

1.5.3 菌株抑菌能力的測(cè)定

采用牛津杯法測(cè)定菌株的抑菌能力[14]。將活化后的菌液在5 000×g離心10 min，上清液用0.22 μm濾膜過濾得到無細(xì)胞上清液。指示菌活化后在5 000×g離心10 min，重懸于無菌生理鹽水中，調(diào)節(jié)指示菌濃度至106 CFU/mL，分別涂布于LB瓊脂培養(yǎng)基中，室溫下放置10 min后用牛津杯[內(nèi)徑(5.1±0.1)mm，外徑(7.1±0.1)mm]均勻打孔。將無細(xì)胞上清液100 μL 加入打好的孔中，37 ℃培養(yǎng)24 h，利用游標(biāo)卡尺測(cè)量抑菌圈的直徑。

1.6 菌株全基因組測(cè)序分析

通過對(duì)實(shí)驗(yàn)室進(jìn)化后的菌株進(jìn)行全基因組測(cè)序，并與原始菌株基因相比，檢測(cè)與耐藥性和益生特性相關(guān)的突變基因。細(xì)菌DNA提取試劑盒(Qiagen，Valencia，CA，美國(guó))提取樣品的基因組DNA，采用微量紫外分光光度計(jì)和瓊脂糖凝膠電泳法測(cè)定基因組DNA的濃度和純度。提取的DNA樣品在Illumina HiSeq 2500平臺(tái)上進(jìn)行測(cè)序，使用CLC Genomics Workbench v12.0軟件進(jìn)行質(zhì)量控制、修剪、參考序列匹配、去重復(fù)、突變檢測(cè)和產(chǎn)物注釋，得到的數(shù)據(jù)用于生物信息學(xué)分析[15]。

1.7 數(shù)據(jù)統(tǒng)計(jì)分析

所有實(shí)驗(yàn)重復(fù)測(cè)定3次，所得數(shù)據(jù)用Excel軟件進(jìn)行統(tǒng)計(jì)分析，并利用DPS數(shù)據(jù)處理系統(tǒng)進(jìn)行差異顯著性分析，用Origin Pro 8.5軟件進(jìn)行繪圖，數(shù)據(jù)表示為平均值±標(biāo)準(zhǔn)差。

2 結(jié)果與分析

2.1 植物乳桿菌對(duì)頭孢氨芐耐藥性的進(jìn)化

植物乳桿菌在有頭孢氨芐和無頭孢氨芐條件下的耐藥性進(jìn)化結(jié)果見圖1。

A-有頭孢氨芐；B-無頭孢氨芐
圖1 植物乳桿菌在有、無頭孢氨芐的培養(yǎng)基中的耐藥性
Fig.1 The resistance of Lactobacillus plantarum in medium with or without cephalexin
注：對(duì)照為在無頭孢氨芐的LSM培養(yǎng)基中傳代的原始菌株

由圖1可知，頭孢氨芐對(duì)植物乳桿菌的初始MIC值為16 μg/mL，在頭孢氨芐的存在下植物乳桿菌的MIC值逐漸提高，在進(jìn)化50 d后植物乳桿菌的MIC值達(dá)到最大,為8 192 μg/mL，繼續(xù)傳代時(shí)MIC值保持穩(wěn)定。為探究高耐藥菌株的穩(wěn)定性，將在頭孢氨芐中傳代后得到的菌株在去除頭孢氨芐的培養(yǎng)基中繼續(xù)傳代培養(yǎng)(圖1-B)，發(fā)現(xiàn)菌株的MIC值在傳代初期顯著降低，經(jīng)過5 d適應(yīng)后，菌株的MIC值降至4 096 μg/mL，但在此后保持穩(wěn)定。原始菌株(對(duì)照)在傳代過程中MIC值為16 μg/mL，一直保持穩(wěn)定。與原始菌株的MIC值相比，在有頭孢氨芐條件下植物乳桿菌的MIC值提高了512倍，而在無頭孢氨芐條件下植物乳桿菌的MIC值雖然有所降低，但比原始菌株也提高了256倍，這表明通過實(shí)驗(yàn)室進(jìn)化植物乳桿菌對(duì)頭孢氨芐耐藥性的獲得是不可逆的。

對(duì)植物乳桿菌進(jìn)化期間的耐藥性檢測(cè)(表1)發(fā)現(xiàn)植物乳桿菌原始菌株為敏感型菌株，進(jìn)化后的LpR′和LpR菌株都表現(xiàn)出高的耐藥性，這也進(jìn)一步說明通過實(shí)驗(yàn)室進(jìn)化可獲得高耐藥型菌株。

表1 植物乳桿菌進(jìn)化期間對(duì)頭孢氨芐的耐藥性
Table 1 The resistance of Lactobacillus plantarum to cephalexin during evolution

注：Lp0為原始菌株；LpR′為在頭孢氨芐條件下傳代的高耐藥性菌株；LpR為在去除頭孢氨芐后傳代的高耐藥性菌株；臨界值采用EFSA標(biāo)準(zhǔn)(EFSA-Q-2004-079 Opinion of the Scientific Panel on Additives and Products or Substances used in Animal Feed on the updating of the criteria used in the assessment of bacteria for resistance to antibiotics of human or veterinary importance)，MIC值>臨界值時(shí)為耐藥型(R)，MIC值≤臨界值為敏感型(S)

2.2 植物乳桿菌進(jìn)化過程中益生特性的變化

2.2.1 植物乳桿菌的耐酸能力

植物乳桿菌進(jìn)化過程中耐酸能力變化見圖2。隨著pH的降低，菌株活菌數(shù)有逐漸降低的趨勢(shì)，尤其是當(dāng)pH為2時(shí)活菌數(shù)顯著降低。然而在相同pH條件下，原始菌株(Lp0)與在有頭孢氨芐傳代的高耐藥性菌株(LpR′)和無頭孢氨芐傳代的高耐藥性菌株(LpR)之間無顯著差異(P>0.05)，這表明植物乳桿菌在進(jìn)化期間的耐酸能力保持穩(wěn)定，不受進(jìn)化過程的影響。

2.2.2 植物乳桿菌的耐膽鹽能力

植物乳桿菌進(jìn)化過程中耐膽鹽能力變化見圖3。隨著培養(yǎng)基中膽鹽濃度的增加，菌株的存活率逐漸降低，但在相同膽鹽濃度的培養(yǎng)基中，植物乳桿菌原始菌株(Lp0)與在有頭孢氨芐傳代的高耐藥性菌株(LpR′)和無頭孢氨芐傳代的高耐藥性菌株(LpR)之間的存活率無顯著性差異(P>0.05)，表明植物乳桿菌在進(jìn)化后的耐膽鹽能力穩(wěn)定。

圖2 植物乳桿菌在進(jìn)化期間耐酸能力的變化
Fig.2 Changes in acid tolerance of Lactobacillus plantarum during evolution
注：Lp0為原始菌株；LpR′為在頭孢氨芐條件下傳代的高耐藥性菌株； LpR為在去除頭孢氨芐后傳代的高耐藥性菌株；a表示差異不顯著 (P>0.05)(下同)

圖3 植物乳桿菌在進(jìn)化期間耐膽鹽能力的變化
Fig.3 Changes in bile salts tolerance of Lactobacillus plantarum during evolution

2.2.3 植物乳桿菌的黏附能力

植物乳桿菌進(jìn)化期間菌株的黏附特性用菌株的疏水性和自凝集能力來評(píng)價(jià)[12]。由表2可以看出，原始菌株(Lp0)和進(jìn)化菌株(LpR′和LpR)的自凝集率在培養(yǎng)不同時(shí)間有一定的變化，在培養(yǎng)2 h時(shí)，Lp0、LpR′和LpR菌株的自凝集率較低，但在培養(yǎng)16、20、24 h后，菌株的自凝集率均有不同程度的提高。但在培養(yǎng)相同時(shí)間時(shí)，Lp0、LpR′和LpR菌株之間無顯著差別(P>0.05)，表明植物乳桿菌在進(jìn)化后自凝集能力保持穩(wěn)定。菌株在二甲苯、氯仿和乙酸乙酯溶劑中的疏水率有一定的差別，原始菌株的疏水率較低，但通過進(jìn)化后的LpR′和LpR菌株的疏水率均有不同程度提高(P<0.05)，且進(jìn)化后的LpR′和LpR菌株間無顯著差異(P>0.05)，這表明植物乳桿菌在進(jìn)化后的疏水性有所提高。

表2 植物乳桿菌進(jìn)化期間的細(xì)胞疏水性和自凝集能力 單位：%

Table 2 Cell hydrophobicity and self-aggregation ability of Lactobacillus plantarum during evolution

注：同行不同小寫字母表示差異顯著(P<0.05)(下同)

2.2.4 植物乳桿菌的抑菌能力

植物乳桿菌進(jìn)化期間菌株的抑菌能力見表3。植物乳桿菌對(duì)2種革蘭氏陽性(G+)菌和2種革蘭氏陰性(G-)菌均有一定的抑制作用。植物乳桿菌原始菌株(Lp0)的抑菌圈直徑較大，具有較強(qiáng)的抑菌能力。通過進(jìn)化后的LpR′和LpR菌株對(duì)4種致病菌也具有較好的抑菌性。與原始菌株(Lp0)相比，進(jìn)化后的LpR′和LpR菌株對(duì)金黃色葡萄球菌(G+)抑制效果有所提高，而對(duì)大腸桿菌(G-)的抑制效果有輕微降低。總體而言，植物乳桿菌在進(jìn)化后對(duì)單核細(xì)胞增生李斯特菌、金黃色葡萄球菌、大腸桿菌和沙門氏菌4種致病菌的抑制效果基本穩(wěn)定。

表3 植物乳桿菌進(jìn)化期間的抑菌能力
Table 3 Antimicrobial properties of Lactobacillus plantarum during evolution

2.3 植物乳桿菌進(jìn)化菌株突變基因的分析

通過對(duì)植物乳桿菌進(jìn)化后獲得的高耐藥性菌株LpR進(jìn)行全基因組測(cè)序，并與原始菌株的基因序列比較，檢出與耐藥性和益生特性相關(guān)的突變基因及突變產(chǎn)物(表4)。在LpR菌株中共檢測(cè)到3種與頭孢氨芐相關(guān)的基因突變，其突變產(chǎn)物分別為耐藥性MFS轉(zhuǎn)運(yùn)體(drug resistance MFS transporter)、絲氨酸型D-Ala-D-Ala羧肽酶(serine-type D-Ala-D-Ala carboxypeptidase)和推定折疊酶蛋白PrsA2(putative foldase protein PrsA2)。同時(shí)，在LpR菌株中也檢測(cè)到2種與益生特性相關(guān)的基因突變，其突變產(chǎn)物分別為YibE/F樣蛋白(YibE/F-like protein)和推定折疊酶蛋白PrsA2(putative foldase protein PrsA2)。這些突變基因編碼的突變產(chǎn)物在植物乳桿菌進(jìn)化過程中對(duì)其耐藥性和益生特性起至關(guān)重要的作用。

表4 植物乳桿菌進(jìn)化中與耐藥性和益生特性相關(guān)的基因突變
Table 4 Gene mutations related to resistance and probiotic properties in the evolution of Lactobacillus plantarum

注：SV為結(jié)構(gòu)突變

3 討論

細(xì)菌的耐藥性通常通過自然進(jìn)化產(chǎn)生，這種進(jìn)化過程具有相當(dāng)大的隨機(jī)性和不可控性[16-17]。當(dāng)細(xì)菌形成耐藥性后可使一些抗生素的治療失敗，然而益生菌獲得耐藥性后也許對(duì)益生作用產(chǎn)生積極影響，尤其是當(dāng)益生菌與抗生素聯(lián)合使用時(shí)效果更加顯著[18]。因此，有關(guān)益生菌耐藥性馴化已日益受到人們的關(guān)注[19]。為了進(jìn)行可控的益生菌耐藥性馴化，實(shí)驗(yàn)室進(jìn)化已廣泛應(yīng)用，GEORGE等[19]對(duì)植物乳桿菌在氨基糖苷類抗生素中進(jìn)行進(jìn)化，獲得高耐藥性菌株，我們從前也對(duì)植物乳桿菌在氨基糖苷類抗生素中進(jìn)行馴化，獲得了高耐藥性的菌株[20]。本研究中植物乳桿菌(ATCC 14917)原始菌株對(duì)頭孢氨芐表現(xiàn)為敏感型，通過在頭孢氨芐存在下進(jìn)行實(shí)驗(yàn)室進(jìn)化，其耐藥性提高了512倍，但這種耐藥性不穩(wěn)定，在去除頭孢氨芐條件后進(jìn)一步進(jìn)行進(jìn)化時(shí)，其耐藥性有所降低，經(jīng)過一段時(shí)間適應(yīng)后，其耐藥性達(dá)到4 096 μg/mL，并在此后進(jìn)化中保持穩(wěn)定，耐藥性比原始菌株提高了256倍，表明通過實(shí)驗(yàn)室進(jìn)化后可獲得高耐藥性的植物乳桿菌菌株，并且這種耐藥性的獲得是不可逆的。

益生菌產(chǎn)生益生作用的前提是能夠通過胃液的酸性環(huán)境和腸道的高膽鹽環(huán)境，并以活菌的狀態(tài)通過胃腸道并定植在腸道中，這樣才能發(fā)揮益生作用[3]，當(dāng)益生菌獲得耐藥性后，其益生性狀可能發(fā)生改變，因此，對(duì)益生菌的益生特性評(píng)價(jià)十分必要。本研究中，對(duì)獲得高耐藥性的植物乳桿菌菌株在酸性環(huán)境(pH 2、3、4)及高膽鹽環(huán)境(1、3、5 g/L)中進(jìn)行培養(yǎng)，與原始菌株相比，其菌株的存活率無明顯變化(P>0.05)。在菌株的黏附特性中，細(xì)胞疏水性對(duì)比原始菌株有一定的提高。這表明當(dāng)植物乳桿菌獲得耐藥性后，其主要益生特性保持穩(wěn)定，一些性狀如疏水性有所提高，這為高耐藥性植物乳桿菌的應(yīng)用提供了一定的基礎(chǔ)。

益生菌進(jìn)化過程中的表型特性(包括耐藥性和益生特性)的改變本質(zhì)上與進(jìn)化過程中菌株的基因突變有關(guān)。通過對(duì)進(jìn)化過程中菌株突變基因的檢測(cè)，可進(jìn)一步從分子水平闡明表型特性變化的機(jī)制。我們從前對(duì)植物乳桿菌在慶大霉素進(jìn)化后的耐藥性菌株的基因檢測(cè)發(fā)現(xiàn)lmrB、HMPREF0531_10299和HMPREF0531_11866基因是提高植物乳桿菌對(duì)慶大霉素耐藥性的主要因素[20]。本研究中，應(yīng)用全基因組測(cè)序技術(shù)對(duì)植物乳桿菌進(jìn)化后獲得的高耐藥性菌株基因突變檢測(cè)發(fā)現(xiàn)，突變基因lmrB、dacA和PrsA可能是增強(qiáng)植物乳桿菌耐藥性的主要原因，lmrB編碼的突變產(chǎn)物耐藥性MFS轉(zhuǎn)運(yùn)體可以刺激細(xì)菌產(chǎn)生多藥轉(zhuǎn)運(yùn)蛋白，在滲透壓促進(jìn)裂解物的跨膜運(yùn)動(dòng)中可以排出抗生素，以保護(hù)細(xì)胞免受損傷[21]，為植物乳桿菌在進(jìn)化過程中耐藥性的提高發(fā)揮了重要作用。dacA編碼的絲氨酸型D-Ala-D-Ala羧肽酶是一種外肽酶，這種酶從肽聚糖胞壁五肽的側(cè)鏈取代末端的D-丙氨酸，使其不能與抗生素結(jié)合從而產(chǎn)生耐藥性[22]。PrsA編碼的推定折疊酶蛋白PrsA2，已被證明可調(diào)節(jié)β-內(nèi)酰胺類抗生素的易感性[23]，該蛋白可能通過調(diào)節(jié)分泌蛋白維持耐藥性菌株在傳代后期耐藥性的穩(wěn)定。同時(shí)檢測(cè)到與益生特性相關(guān)的突變基因，HMPREF 0531_11168和PrsA。HMPREF 0531_11168編碼的YibE/F樣蛋白(YibE/F-like protein)家族中的序列與乳酸菌表達(dá)的2種蛋白質(zhì)YibE和YibF相似，這些序列包含高比例的疏水性殘基[24]，這對(duì)菌株在進(jìn)化過程中保持一定水平的疏水性起著重要作用。PrsA編碼的推定折疊酶蛋白PrsA2會(huì)改變細(xì)胞壁或膜蛋白譜以及與細(xì)胞表面相關(guān)的表型[25]，可以推測(cè)該突變產(chǎn)物在進(jìn)化過程中與菌株的細(xì)胞表面疏水性的提高有關(guān)。

4 結(jié)論

通過實(shí)驗(yàn)室進(jìn)化方法對(duì)植物乳桿菌在頭孢氨芐中進(jìn)行進(jìn)化，獲得了具有高耐藥性的植物乳桿菌，并對(duì)其主要益生特性進(jìn)行評(píng)價(jià)，發(fā)現(xiàn)獲得的高耐藥性植物乳桿菌具有穩(wěn)定的耐酸，耐膽鹽能力以及較好的黏附能力，并對(duì)一些常見致病菌具有穩(wěn)定的抑菌效果，其益生性狀穩(wěn)定。同時(shí)應(yīng)用全基因組測(cè)序技術(shù)對(duì)進(jìn)化過程中突變基因檢測(cè)，檢測(cè)到了與耐藥性和益生特性相關(guān)的突變基因，這為植物乳桿菌與抗生素聯(lián)合應(yīng)用的治療提供基礎(chǔ)。